Sakupljanje, uslovi skladištenja i isporuka materijala za PCR studije. Sop prijem biomaterijala - upravljanje kvalitetom u oblasti zdravstva Pravila za prihvatanje registracije skladištenja biomaterijala



Optimalno vrijeme za analizu krvi je u rasponu od 1 do 4 sata nakon uzimanja.U rasponu od 5 do 30 minuta trombociti se privremeno prilagođavaju antikoagulansu i dolazi do njihove agregacije, što može dovesti do lažnog smanjenja istih u krvi. uzorak.

Krv nije preporučljivo pregledavati kasnije od 8 sati nakon uzimanja, jer Neke karakteristike stanica se mijenjaju: smanjuje se volumen leukocita, povećava volumen crvenih krvnih stanica, što u konačnici dovodi do pogrešnih rezultata mjerenja i pogrešne interpretacije rezultata. Samo koncentracija hemoglobina i broj trombocita ostaju stabilni tokom 24 sata skladištenja krvi.

Krv se ne sme zamrzavati. Kapilarna krv sa K 2 EDTA treba čuvati na sobnoj temperaturi i analizirati u roku od 4 sata nakon uzimanja.

Da bi se osigurali kvalitetni rezultati istraživanja, potrebno je jasno kontrolisati vrijeme i uslove skladištenja uzoraka prije izvođenja analize.

Ukoliko je neophodna odložena analiza (prevoz na velike udaljenosti, tehnička neispravnost uređaja i sl.), uzorci krvi se čuvaju u frižideru (4 o - 8 o C) i pregledaju u roku od 24 sata. Međutim, treba uzeti u obzir da dolazi do bubrenja ćelija i promjena parametara povezanih s njihovim volumenom. Kod praktički zdravih ljudi ove promjene nisu kritične i ne utječu na kvantitativne parametre, ali u prisustvu patoloških stanica, potonje se mogu promijeniti ili čak uništiti u roku od nekoliko sati od trenutka uzimanja krvi.

Neposredno prije testa, krv treba temeljito miješati nekoliko minuta kako bi se razrijedio antikoagulant i ravnomjerno rasporedili formirani elementi u plazmi. Dugotrajno stalno miješanje uzoraka do njihovog pregleda se ne preporučuje zbog mogućeg ozljeda i propadanja patoloških stanica.

Testiranje krvi na automatskom analizatoru vrši se na sobnoj temperaturi. Krv pohranjena u hladnjaku mora se prvo zagrijati na sobnu temperaturu, jer se na niskim temperaturama povećava viskozitet krvi i formirani elementi imaju tendenciju lijepljenja, što zauzvrat dovodi do otežanog miješanja i nepotpune lize. Ispitivanje hladne krvi može izazvati "alarmne signale" zbog kompresije histograma leukocita.

Prilikom izvođenja hematoloških studija na znatnoj udaljenosti od mjesta uzimanja krvi, neizbježno se javljaju problemi povezani s nepovoljnim uvjetima transporta. Uticaj mehaničkih faktora (tresanje, vibracije, mešanje, itd.), temperaturni uslovi, verovatnoća prosipanja i kontaminacije uzoraka mogu uticati na kvalitet analiza. Kako bi se otklonili ovi razlozi, pri transportu epruveta za krv preporučuje se upotreba hermetički zatvorenih plastičnih epruveta i posebnih izoliranih transportnih kontejnera. Prilikom transporta nije dozvoljen kontakt uzorka (sa nativnim materijalom) i uputnice, u skladu sa pravilima biološke sigurnosti.

^ 4.3. Prijem i registracija biološkog materijala

Epruvete sa uzorcima venske krvi dostavljaju se u laboratoriju na dan preuzimanja u police u posebnim vrećama za dostavu biološkog materijala, u kojima epruvete moraju biti u vertikalnom položaju, a kada se transportuju na daljinu - u posebnim kontejnerima.

Zaposleni u laboratoriji koji prima materijal mora provjeriti:

Ispravnost registracije uputnice: na obrascu uputnice se navode podaci o osobi koja se pregleda (prezime, ime i prezime, godine starosti, anamneza ili ambulantna kartica, odjeljenje, dijagnoza, obavljena terapija);

Označavanje epruveta sa uzorcima krvi (moraju biti označene šifrom ili prezimenom pacijenta, identično šifri i prezimenu u obrascu za slanje materijala na istraživanje). Laborant mora registrovati isporučeni materijal i zabilježiti broj epruveta.

^ 4.4 Proračun ćelijskog sastava krvi na hematološkom analizatoru

Proračun staničnog sastava krvi na hematološkom analizatoru mora se provesti u strogom skladu s uputama za uređaj.

Kada radite na hematološkom analizatoru trebate:

Koristite krv stabiliziranu sa K-2 EDTA u preporučenom omjeru za specifične epruvete za sol i jednokratne hematološke epruvete (obične ili vakuumske);

Prije analize pažljivo, ali temeljito promiješati epruvetu s krvlju (u tu svrhu se preporučuje korištenje uređaja za miješanje uzoraka krvi - rotomix);

Koristiti reagense registrovane u skladu sa utvrđenom procedurom; kada mijenjate reagense na proizvode drugog proizvođača, provjerite i uspostavite kalibraciju uređaja;

Pokrenite uređaj, promatrajući sve faze pranja, postižući nulte (pozadinske) vrijednosti indikatora u svim kanalima;

Obratite pažnju na poruke uređaja o mogućim sistematskim greškama: zapamtite da je povećanje MSHC iznad normalnih vrijednosti obično rezultat greške u mjerenju;

Ako se otkrije greška, obavezno otklonite uzrok i nemojte raditi na neispravnom uređaju;

Provedite postupke kontrole kvaliteta prema odgovarajućem programu. sa ocjenom dobijenog rezultata;

Radite smisleno, upoređujući dobijene rezultate sa kliničkim karakteristikama uzoraka pacijenta;

Nakon završetka mjerenja, temeljito isperite analizator;

Prilikom zaustavljanja uređaja na duži vremenski period, obavezno obavite sve postupke očuvanja (ako je moguće, zajedno sa serviserom);

Ukoliko dođe do tehničkih problema, treba potražiti pomoć servisera iz firme koja ima licencu za tehničko održavanje; Ne povjerujte posao neobučenom osoblju.

Prilikom početka rada na hematološkom analizatoru treba uzeti u obzir granice linearnosti mjerenja analiziranih parametara. Procjena uzoraka s vrijednostima analiziranih parametara koje prelaze granicu linearnosti mjerenja može dovesti do pogrešnih rezultata. U većini slučajeva, kada se analiziraju uzorci sa hipercitozama, analizator umjesto vrijednosti mjerenog parametra prikazuje ikonu “D” (razrijediti), što ukazuje na potrebu razrjeđivanja uzorka i ponavljanja mjerenja. Razrjeđenja se moraju provoditi dok se ne dobiju slični konačni rezultati s dva najbliža razrjeđenja.

^ PRIMJER ─ Analiza uzorka od pacijenta sa hiperleukocitozom na tri različita hematološka analizatora prikazana je u tabeli.

Tabela 3

¦Rezultati brojanja količine hiperleukocitoze, obavljeni na tri različita hematološka analizatora


^ Hematološki analizatori

Stepen razblaženja uzorka

Ukupna vrijednost

^ Puna krv

1:1

1:3

1:4

WBC

1

D

274,5

274,5

143,1

715,5

2

322,6

253,2

177,7

141,8

709,0

3

D

D

168,3

139,1

695,5

Tabela pokazuje da je pri analizi pune krvi samo jedan analizator (2.) dao digitalnu vrijednost za broj leukocita, druga dva su ukazivala na potrebu razrjeđivanja uzorka. Naknadno, korak po korak mjerenje uzorka u tri razrjeđenja omogućilo je postizanje bliskih konačnih rezultata na svim uređajima samo pri razrjeđenju 1:3 i 1:4. Tako je ukupan broj leukocita bio 700,0 - 710,0 x 10 9 /l, što je više od 2 puta više od početne vrijednosti dobijene u punoj krvi na 2. analizatoru i 1,5 - u razrjeđenju 1:1 na 1. i 2. analizatori.

  1. ^ Kalibracija hematoloških analizatora
Kalibracija se odnosi na proceduru podešavanja analizatora, što rezultira

Čime se postiže jednakost sistematske komponente greške nuli (nulti pomak) ili potvrđuje da je pomak jednak nuli uzimajući u obzir grešku kalibracije. Kalibracija hematoloških analizatora može se izvesti na dva glavna načina:

Za punu krv;

Zasnovano na stabiliziranim uzorcima krvi sa certificiranim vrijednostima.

^ 5.1 Kalibracija pomoću pune krvi

Kalibracija pune krvi može se izvršiti poređenjem sa referentnim analizatorom čija je kalibracija verifikovana i može se uzeti kao referentna.

Za kalibraciju u poređenju sa referentnim analizatorom koristi se 20 uzoraka venske krvi pacijenata nasumično odabranih iz dnevnog istraživačkog programa laboratorije sa referentnim analizatorom. Krv treba sakupljati u vakuumske epruvete sa antikoagulansom K 2 EDTA. Nakon analize na referentnom analizatoru, epruvete se dostavljaju u laboratorij na analizu na kalibriranom uređaju. Vrijeme između mjerenja na referentnom i kalibriranom analizatoru ne bi trebalo da prelazi 4 sata. Analizu kalibracionih uzoraka na instrumentu koji se kalibriše treba izvršiti na isti način kao i analizu uzoraka pacijenata. Dobijeni rezultati se unose u tabelu u obliku datom u Dodatku 1. Ovi rezultati se koriste za određivanje odgovarajućih faktora kalibracije, koji su numerički jednaki koeficijentima nagiba kalibracionih linija koje prolaze kroz ishodište koordinata na grafu.

Faktori kalibracije se izračunavaju na računaru pomoću programa EXCEL, koji je dio Microsoft OFFICE paketa bilo koje verzije. Za izračunavanje faktora kalibracije u ovom programu, konstruiše se dijagram raspršivanja, gdje se izmjerene vrijednosti iscrtavaju duž X ose, referentne vrijednosti se crtaju duž ose Y, a linija regresije se postavlja kroz ishodište koordinata. Program crta kalibracionu liniju i određuje njen nagib, što je željeni faktor kalibracije. Ako se otkriju grube greške - tačke koje su značajno odvojene od kalibracione linije na grafikonu, moraju se ukloniti iz proračuna (izbrisati celu liniju u EXCEL tabeli). Rezultirajući faktor kalibracije unosi se u tabelu Dodatka 1 i koristi se za ručno podešavanje kalibracije uređaja u skladu s njegovim uputama za upotrebu.


    1. ^ Kalibracija pomoću stabiliziranih uzoraka krvi sa certificiranim vrijednostima
Ova metoda kalibracije temelji se na komercijalnim kalibracijskim i kontrolnim materijalima, koji su umjetna mješavina stabiliziranih ljudskih eritrocita i fiksiranih ljudskih ili životinjskih stanica koje oponašaju leukocite i trombocite. Zbog značajne razlike u biološkim svojstvima komponenti ovih materijala od prirodne krvi, certificirane vrijednosti hematoloških parametara zavise od specifičnog tipa analizatora.

Kad god je moguće, treba koristiti kalibratore koje je proizvođač posebno dizajnirao za kalibraciju određene vrste analizatora. Greške zadane tačke u modernim hematološkim kalibratorima su generalno u skladu sa medicinskim zahtevima. Međutim, takvi kalibratori nisu dostupni za sve tipove analizatora. Osim toga, zbog ograničenog roka trajanja (obično ne više od 45 dana), nije uvijek moguće dobiti uzorke kojima nije istekao rok trajanja.

Proizvođač nije namijenio kontrolne materijale za potrebe kalibracije: tolerancije vrijednosti su mnogo šire, a metode certifikacije i kontrole proizvodnje nisu tako stroge kao za kalibratore. Prilikom kalibracije kontrolni materijali se mogu koristiti samo kao jedan izvor informacija o metrološkim svojstvima uređaja.

Treba, međutim, imati na umu da kada se za potrebe kalibracije koriste i kontrolni materijali i kalibratori, karakteristike pripreme uzorka i rada analizatora imaju značajan uticaj na komponente sistematske greške. Ovi uticajni faktori ne mogu se uzeti u obzir prilikom kalibracije sa komercijalnim materijalima. Kao rezultat toga, u svim slučajevima izvršena kalibracija mora biti potvrđena analizom statistike rezultata dobijenih u uzorcima pacijenata (indeksi eritrocita, normalni rasponi).

5.2.1 Učestalost kalibracije hematoloških analizatora

Zahtjevi za frekvenciju kalibracije obično su sadržani u uputama za rad analizatora. Obično je kalibracija potrebna nakon popravke ili kada se otkrije značajno odstupanje u postupcima interne laboratorijske kontrole kvaliteta.

5.2.2 Postupak kalibracije

Postupak kalibracije se provodi u skladu s uputama za uporabu analizatora.

5.2.3 Praćenje rezultata kalibracije

Ova kontrola se sastoji od analize kalibracionog uzorka odmah nakon kalibracije. Završena kalibracija je prihvaćena ako rezultati analize odgovaraju vrijednostima kalibracije, uzimajući u obzir analitičku varijaciju analizatora.

5.2.4 Provjera kalibracije pomoću indeksa crvenih krvnih zrnaca

Ova metoda provjere i dorade kalibracije koristi činjenicu da prosječne vrijednosti indeksa crvenih krvnih zrnaca - MCHC, MCH i MCV kod pacijenata imaju prilično male varijacije i stoga se mogu efikasno koristiti za kontrolu kalibracije i daljnju kontrolu kvaliteta. Preporučeni broj uzoraka za prosječenje je 20. Bilo koji uzorci pacijenata mogu se koristiti za određivanje srednje vrijednosti MCHC, dok pacijente s anemijom treba isključiti da bi se odredila srednja vrijednost MCHC i MCV.

Mnogi moderni hematološki analizatori imaju ugrađene programe za izračunavanje trenutnih prosjeka, što uvelike olakšava obradu podataka.

Ciljne vrijednosti indeksa eritrocita u prosjeku na 20 uzoraka pacijenata u dobi od 18 do 60 godina, bez obzira na spol, prikazane su u tabeli 4.

Tabela 4

Ciljne vrijednosti indeksa eritrocita

Ako su dobijene prosječne vrijednosti izvan kontrolne tolerancije, to znači da je potrebno podesiti MCV ili Hgb ili RBC kalibraciju.

Prilikom utvrđivanja razloga za nezadovoljavajuću kalibraciju parametara crvenih krvnih zrnaca pri korištenju komercijalnih kalibracijskih/kontrolnih materijala, treba uzeti u obzir sljedeću procjenu pouzdanosti certificiranih vrijednosti materijala:

Najprecizniji i vremenski najstabilniji parametar je koncentracija crvenih krvnih zrnaca;

Stabilan parametar je Hgb, ali može zavisiti od upotrijebljenih reagensa (na primjer, cijanogena ili bez cijanogena);

Najnestabilniji parametar je MCV. MCV vrijednost ima tendenciju mijenjanja tijekom cijelog vijeka trajanja materijala u prilično širokom rasponu vrijednosti. Prilikom rafiniranja MCV kalibracije, podaci dobiveni analizom prosječnih indeksa crvenih krvnih zrnaca imaju prednost u odnosu na certificirane vrijednosti u stabiliziranim uzorcima krvi.

Pod pretpostavkom da je kalibracija eritrocita ispravna, u tabeli 5 su prikazani mogući razlozi zbog kojih prosječne vrijednosti indeksa padnu izvan kontrolne tolerancije.

Tabela 5

Razlozi za prekoračenje prosječnih vrijednosti indeksa eritrocita


Eritrociti indeksi

Prosječna vrijednost indeksa

Prosječna vrijednost indeksa

Prosječna vrijednost indeksa

Prosječna vrijednost indeksa

MCHC

Ispod granice

Iznad granice

Iznad granice

Ispod granice

MCH

U granicama tolerancije

U granicama tolerancije

Iznad granice

Ispod granice

MCV

Iznad granice

Ispod granice

U granicama tolerancije

U granicama tolerancije

Uzrok

Overpriced MCV

potcijenjen MCV

High Hgb

Low Hgb

Pošaljite svoj dobar rad u bazu znanja je jednostavno. Koristite obrazac ispod

Studenti, postdiplomci, mladi naučnici koji koriste bazu znanja u svom studiranju i radu biće vam veoma zahvalni.

Objavljeno na http://www.allbest.ru/

"Medicinski fakultet Nižnji Novgorod"

(GBOU SPO NO "NMK")

Test

Tema: “Organizacija prijema, označavanja i registracije biomaterijala”

Završeno:

student grupe 221-IV lab.

Stepanychev M.N.

Učitelj:

Belova M.N.

N. Novgorod 2016

Uvod

1. Teorijski dio

1.1 Registracija uputa

1.2 Načini laboratorijskog istraživanja

1.3 Uslovi skladištenja i transporta materijala za klinička laboratorijska istraživanja

1.4 Obim primjene

1.5 Organizacija procesa transporta biomaterijala kurirskom službom i odgovornost kurira

1.6 Prijem biomaterijala u laboratoriju

1.7 Transfer biomaterijala i upućivanje u relevantna odjeljenja laboratorije

1.8 Registracija narudžbenica od strane operatera

2. Praktični dio

Zaključak

Uvod

Laboratorijski testovi su najosjetljiviji pokazatelji stanja pacijenta. Specijalisti kliničke laboratorijske dijagnostike odavno su shvatili da mnogi faktori mogu utjecati na rezultate laboratorijskih pretraga. Među tim faktorima: ispravno dostavljeni i kompetentno dizajnirani uzorci biomaterijala i prateće dokumentacije. U nedostatku takvih pratećih informacija (faktora koji utiču na laboratorijske testove), kliničar može pogrešno protumačiti rezultat i poduzeti pogrešne mjere za pacijenta.

Svrha ovog testa je da skrene pažnju na potrebu revizije pravila za prijem i obradu dokumentacije biološkog materijala. Pravilna primjena informacija bi trebala dovesti do smanjenja nepotrebnih istraživanja, smanjenja troškova i boljeg razumijevanja rezultata istraživanja.

Cilj:

Proučiti organizaciju prijema, označavanja i registracije biomaterijala.

Zadaci:

1. Studija upotrebe biomaterijala.

2. Priprema svoje dokumentacije.

1. Teorijski dio

Trenutno, laboratorijske metode istraživanja igraju ključnu ulogu u dijagnostici i liječenju bolesti. Prilikom pregleda pacijenata od velike su važnosti organizacioni aspekti laboratorijske dijagnostike, osiguranje tačnosti i ispravnosti laboratorijskih pretraga, korištenje stabilnih, tehnički pouzdanih analitičkih metoda, te kontrola kvaliteta istraživanja.

Zdravstvene ustanove koriste prilično širok spektar laboratorijskih metoda, a uz objedinjene rutinske tehnike koriste se i savremene metode istraživanja koje su vrlo specifične i informativne.

Uvođenje visokospecifičnih laboratorijskih metoda za dijagnostiku bolesti u zdravstvenu praksu zahtijeva standardizaciju u svim fazama dijagnostičkog procesa.

Udio grešaka u predanalitičkoj fazi u ukupnom broju laboratorijskih grešaka kreće se od 50% do 95%. Greške koje se javljaju u predanalitičkoj fazi laboratorijskog istraživanja obezvrijeđuju cijeli dalji tok laboratorijskih istraživanja, dovode do gubitka značajnih sredstava i diskredituju laboratorijske metode u očima ljekara koji je prisutan zbog nepouzdanosti dobijenih rezultata.

Za sve vrste laboratorijskih istraživanja, preanalitička faza kombinuje skup procesa prije same laboratorijske analize, koji se sastoji od:

· temeljita priprema predmeta;

· dobijanje biomaterijala (krvi, urina, itd.);

· transport biomaterijala do laboratorije;

· primarna obrada biomaterijala u laboratoriji;

· distribucija i skladištenje biomaterijala u laboratoriji.

Glavni zadatak ovih faza preanalitičkog procesa je osigurati stabilnost (sigurnost) komponenti biomaterijala uzetih za istraživanje i minimizirati utjecaj različitih faktora koji mijenjaju njihov kvalitet.

U tom smislu se razmatra preanalitička faza.

1.1 Registracija uputa

Prilikom preuzimanja materijala, morate ispravno popuniti upute. Epruvete i prateća dokumentacija i etikete ne smiju se miješati. Pretinac i serijski broj su naznačeni na tubi. Na epruveti sa krvlju odrediti grupu i Rh pripadnost - dodatno prezime pacijenta.

U smjeru za analizu prilikom uzimanja biomaterijala morate navesti: (sve podatke uzimajući u obzir naredbu Ministarstva zdravlja Republike Bjelorusije od 28. septembra 2007. br. 787 o obrascima primarne medicinske dokumentacije)

· podaci o pacijentu - prezime, ime, patronim, datum rođenja, pol, adresa, broj istorije bolesti, dijagnoza.

· ime doktora koji je biomaterijal poslao na analizu;

datum i vrijeme uzimanja biomaterijala;

· dati kratak opis biomaterijala koji se šalje (navesti vrstu biomaterijala), materijal koji ne odgovara deklarisanom neće biti ispitivan - npr. pljuvačka umjesto sputuma, serum umjesto plazme;

· karakteristike prikupljanja biomaterijala (mesto uzimanja - za krv, za urin - zapremina, porcija, vreme uzimanja);

· sve potrebne studije, a ne samo “biohemijski test krvi”.

Uputnicu za analizu potpisuje ljekar.

Izbjegavajte dupliranje testova.

1.2 Načini laboratorijskog istraživanja

Sva krv treba da se isporučuje samo u centrifugiranim, hemijski čistim epruvetama uzetim u laboratoriji. Krv za istraživanje u režimu hitne analize treba da se isporučuje odvojeno i ne stavlja se na sto zajedno sa zakazanim testovima bez upozorenja. Zaposlenik odjela koji je dostavio hitni test mora osigurati da laboratorijski radnik prihvati test.

Hitne pretrage se rade u roku od 2 sata, samo za pacijente u teškom stanju, ako je hitna intervencija neophodna. Za hitnu analizu dodijeljen je poseban laboratorijski asistent i doktor laboratorijske dijagnostike. Izvođenje istraživanja u režimu hitne analize zahtijeva veću potrošnju reagensa i radnog vremena stručnjaka, a kao rezultat toga, veće finansijske troškove.

Trenutno u urgentnoj laboratoriji za analizu se po hitnom postupku obavljaju sljedeće analize krvi:

Određivanje koncentracije hemoglobina

Izračun hematokrita

· Brojanje broja crvenih krvnih zrnaca

· Broj leukocita

· Broj leukocita

Broj trombocita

Analiza dežurstva se obavlja tokom radnog dana - za novoprimljene pacijente ili kada se stanje pacijenta pogorša i ne zahtijeva hitnu intervenciju.

Napomena: Normalne laboratorijske vrijednosti odnose se na uzorke natašte. Stoga se interpretacija rezultata hitnih i rutinskih istraživanja ne može sastojati od jednostavnog poređenja sa normalnim vrijednostima.

Planirane studije su sve studije zakazane dan ranije, a materijal za koji stiže u laboratoriju od 7 do 9 sati. Vrijeme izvršenja je do 6 sati, u nekim slučajevima je potrebna i duža analitička procedura.

Laboratorijski pregled zaposlenih vrši se po uputstvu lekara odgovornog za zdravstveni pregled zaposlenih. U svim ostalim slučajevima, pregled se vrši uz plaćanje.

1.3 Uslovi skladištenja i transporta kliničkog laboratorijskog materijala

Kako bi se spriječila profesionalna infekcija, svaka biološka tekućina mora se smatrati potencijalno zaraznim materijalom, poštujući sva relevantna pravila za rukovanje njome tokom transporta, skladištenja i rukovanja. Biomaterijali od infektivnih pacijenata trebaju biti posebno označeni i s njima se rukuje izuzetnom pažnjom. Svi biomaterijali pacijenata oboljelih od HIV infekcije moraju biti označeni na smjeru "šifra 120" uz obavezno navođenje broja istorije bolesti.

Dobivenu biološku tekućinu treba što prije dostaviti u laboratoriju. Ako je potrebno odrediti glukozu i indikatore acidobaznog statusa, krv treba odmah dostaviti u laboratorij.

U svim fazama transporta i obrade krv treba držati u epruvetama, zatvorenim poklopcima, kako bi se spriječilo isparavanje i kontaminacija mikrobima i raznim vanjskim tvarima.

Prilikom isporuke, epruvete treba postaviti okomito, sa poklopcima prema gore, što pomaže očuvanju uzoraka i ubrzava stvaranje ugruška prilikom prijema seruma, smanjuje drhtanje tokom transporta i rizik od hemolize.

Epruvete ne bi trebalo da budu napunjene do ivica. Punu krv dobijenu bez antikoagulansa ne treba hladiti prije isporuke u laboratoriju kako bi se izbjegla hemoliza.

Centrifugiranje se provodi najkasnije 1 sat nakon uzimanja biomaterijala.

1.4 Obim primjene

Ovim standardnim operativnim postupkom (u daljem tekstu SOP) definisan je postupak prijema, registracije biološkog materijala koji ulazi u laboratoriju iz proceduralne prostorije (naziv ustanove) i drugih ustanova koje opslužuje laboratorija, kao i utvrđivanje nedosljednosti i njihovo otklanjanje.

Ovaj SOP je namijenjen laboratorijskom asistentu i operateru laboratorije.

1.5 Organizacija procesa transporta biomaterijala kurirskom službom i odgovornost kurira

Temperaturu u frižideru, koja je prikazana na displeju u unutrašnjosti automobila, kurir beleži u dnevniku „Dnevnik temperaturnih uslova u automobilskim frižiderima“, a u ovom dnevniku kurir navodi svoje puno ime, registarsku tablicu automobila. i vrijeme polaska automobila po biomaterijal neposredno prije putovanja u ustanove.

Kurir, po dolasku u zdravstvenu ustanovu, odlazi u registar ove ustanove, gdje preuzima kontejnere sa raznim biomaterijalima. Svaki kontejner sadrži naziv ustanove i vrstu biomaterijala (krv, urin, izmet, stakalca sa razmazima, struganje). Kurir postavlja kontejnere horizontalno u frižider mašine, kao što je prikazano na fotografiji.

Kurir je odgovoran za integritet kontejnera, njihovu sigurnost, za osiguranje odgovarajućih temperaturnih uslova u frižideru automobila (+4 - +8 o C), kao i za sigurnost biomaterijala dostavljenog iz ustanova u laboratorija. Tokom putovanja, kurir prati temperaturu u frižideru automobila, koja se prikazuje na displeju postavljenom u unutrašnjosti automobila.

1.6 Prijem biomaterijala u laboratoriju

Temperaturu prikazanu na displeju u frižideru automobila u trenutku uklanjanja kontejnera kurir beleži u dnevniku „Dnevnik temperaturnih uslova u frižiderima automobila“ u koloni koja odgovara državnom broju automobila. I također u istom dnevniku vozač označava vrijeme dolaska automobila sa biomaterijalom iz institucija.

Kurir predaje etiketirane posude sa uzorcima krvi, brisevima i struganjima medicinskom laboratorijskom asistentu.

U ordinaciji, medicinski laboratorijski asistent otvara poklopac posude i vadi epruvete s krvlju, stakalca sa razmazima i struganjima, te fascikle s uputama za istraživanje.

Razvrstava epruvete odvojeno u police, prema vrsti epruveta (biohemijske, hematološke i koagulološke) i nazivima ustanova koje su naznačene na policama.

1.7 Transfer biomaterijala i upućivanje u relevantna odjeljenja laboratorije

U ordinaciji, medicinski asistent laboratorijski asistent postavlja police sa epruvetama za biohemijske, imunološke, koagulološke studije u kontejnere sa oznakom „za prenošenje biomaterijala“ i nosi ih na centrifugiranje.

Medicinsko-laboratorijski radnik poziva hematološke i PCR odjele kako bi biomaterijal uzeli bolničar-laboranti iz nadležnih odjeljenja.

Zatim prenosi preporuke za istraživanje operaterima registracije.

1.8 Registracija narudžbenica od strane operatera

Procedura registracije:

- operater očitava bar kod skenerom, zalijepljen na formular za upute;

- zatim operater u LIS unosi podatke o putovnici pacijenta: puno ime, datum rođenja, adresu stanovanja i druge podatke: izvor naloga (obavezno zdravstveno osiguranje, dobrovoljno zdravstveno osiguranje, gotovinsko plaćanje, klinički pregled), broj ustanove, odjeljenje, puno ime i prezime doktora koji je naručio pregled, dijagnostiku, MES šifra (medicinski i ekonomski standard).

- nakon toga operater u LIS unosi one indikatore koje je ljekar koji prisustvuje propisao i generirani nalog pohranjuje u LIS.

2. Praktični dio

Gradska klinička bolnica br. 40 otvorena je 1966. godine i trenutno predstavlja jedini multidisciplinarni medicinski kompleks u Nižnjem Novgorodu koji uključuje: bolnicu, porodilište, antenatalnu kliniku, kliniku za djecu i odrasle. To je glavna klinička baza Odeljenja za hirurgiju, centra za usavršavanje i stručnu prekvalifikaciju specijalista, Državne medicinske akademije Nižnji Novgorod, koja na bazi bolnice radi od njenog otvaranja. Funkcionalna karakteristika bolnice br. 40 je prijem pacijenata sa gotovo bilo kojom patologijom u hitnim slučajevima 24 sata dnevno. Hitna pomoć dnevno dopremi više od 100 pacijenata.

Bolnica i njeni strukturni odjeli stvorili su sve potrebne uslove za pružanje pravovremene pomoći pacijentima i kvalitetnog liječenja. Ovdje se pouzdano koriste i usavršavaju tradicionalne metode, a aktivno se uvode najnovije medicinske tehnologije. Savremena dijagnostička oprema se koristi svuda. Bolnica je u protekle dvije godine, u sklopu programa modernizacije zdravstvene zaštite, dobila 216 jedinica medicinske opreme, uključujući savremenu endoskopsku, laboratorijsku i ultrazvučnu dijagnostičku opremu, što je omogućilo izvođenje složenijih intervencija u hepatopankreatologiji, koloproktologiji i flebologija.

Vodeći stručnjaci aktivno učestvuju na specijalizovanim seminarima, konferencijama i simpozijumima na ruskom i međunarodnom nivou. laboratorijski klinički biomaterijal

Gradska bolnica br. 40 je široka klinička baza u kojoj se u praksi primenjuju savremeni naučni razvoji i tehnike. Ovdje se dugo i plodno odvija zajednički rad sa Odjeljenjem za hirurgiju Centra za usavršavanje i profesionalnu prekvalifikaciju specijalista Državne medicinske akademije Nižnji Novgorod. Njegov organizator, profesor Igor Leonidovič Rotkov, postao je osnivač hirurške škole, koju su pohađali gotovo svi bolnički hirurzi i danas nastavljaju da razvijaju nagomilano iskustvo, uvodeći nove razvoje i tehnike. Na bazi bolnice formiran je gradski flebološki centar. Odeljenje za dečiju hirurgiju već nekoliko decenija ima naučno odeljenje za pedijatrijsku gastroenterologiju kao ogranak Instituta za pedijatriju Nižnji Novgorod. Na bazi porodilišta postoje odeljenja za akušerstvo i ginekologiju za usavršavanje lekara i obuku studenata NSMA. Ovdje stručnjaci iz mnogih regija Rusije usavršavaju svoje vještine. Zajednički rad naučnika praktičara i bolničkih doktora doprinosi rastu njihovih vještina, a inovacije u raznim oblastima medicine omogućavaju postizanje jedinstvenih rezultata u liječenju pacijenata.

Na osnovu rezultata rada Gradske kliničke bolnice broj 40 odbranjeno je 9 doktorskih i 29 kandidatskih disertacija. Primljeno je više od 70 autorskih certifikata i patenata za metode rada, dijagnostike i korisne modele koje su razvili bolnički specijalisti.

Rad tima ljekara visoko je cijenjen dodjelom Nagrade grada Nižnjeg Novgoroda u oblasti medicine 2012. godine. Rad je posvećen jednom od najhitnijih i najsloženijih problema hirurgije - liječenju flebotromboze donjih ekstremiteta, u posljednjem petogodišnjem periodu opservacije i pružanja hitne i planske hirurške pomoći pacijentima sa flebotrombozom u uslovima gradski flebološki centar na bazi Državne budžetske zdravstvene ustanove „Gradska klinička bolnica br. 40“.

Porodilište, koje je u sklopu bolnice, ima 205 kreveta i najveće je u regiji Nižnji Novgorod. Trenutno služi kao regionalni perinatalni centar, prihvata 4500-5000 porođaja godišnje. Sav rad akušera i ginekologa usmjeren je na smanjenje broja slučajeva pobačaja i trudnoće nakon poroda, postizanje prirodnog porođaja i poboljšanje stope preživljavanja novorođenčadi.

Od januara 2010. godine u zidovima ambulante za odrasle uspješno radi Dom zdravlja, prepoznat kao jedan od najboljih na regionalnom nivou. Svoje radno iskustvo predstavio je šef Centra na Sveruskom forumu - „Zdrava nacija je osnova prosperiteta Rusije“.

U 2012. godini, u cilju povećanja dostupnosti medicinske njege u udaljenim područjima, organizovana je i uspješno radi ordinacija ljekara opšte prakse u okviru ambulante za odrasle.

Više od hiljadu zaposlenih u ustanovi, uključujući doktore, medicinske sestre, laboratorijske asistente, bolničare, tehničko osoblje, svojim trudom, brigom i toplinom stvaraju atmosferu humanizma i milosrđa, koja je karakteristična za osoblje Državne budžetske ustanove. br. 40.

Tokom vježbe savladan je cijeli proces prijema i registracije biomaterijala.

1. prihvatanje biomaterijala i obrazaca.

2. Studija biomaterijala

3. Zapisivanje rezultata na obrascu

4. Obračun rezultata u zapisnicima analize

5. Odlaganje biomaterijala

Zaključak

Glavni oblik kontrole organizacije prijema, označavanja i registracije biomaterijala su periodične eksterne i interne inspekcije. Ali ovaj oblik kontrole se ne može smatrati efikasnim. Problem kontrole ove faze laboratorijskih istraživanja i danas ostaje jedan od najozbiljnijih problema moderne laboratorijske medicine.

Čini se da je najefikasniji i najefikasniji korak stvaranje standardnih uslova za prikupljanje, transport i skladištenje bioloških uzoraka od pacijenta (upotreba vakuuma ili drugih sistema). Uvođenje ovakvih sistema u praksu ne utiče na sve faze laboratorijskog istraživanja i generalno podiže organizaciju laboratorijskog rada na drugačiji nivo. Njihova upotreba ne samo da olakšava organizaciju i značajno podstiče standardizaciju preanalitičke faze, već i stvara uslove neophodne za implementaciju savremenih laboratorijskih sistema. Ako su dostupni analizatori, mogu se koristiti kao primarne cijevi, što uvelike pojednostavljuje analitičku fazu laboratorijskih istraživanja.

Objavljeno na Allbest.ru

...

Slični dokumenti

    Glavni ciljevi mikrobioloških istraživanja u kliničkoj laboratorijskoj dijagnostici. Oprema za bakteriološku laboratoriju, automatizovana tehnologija visokih performansi za identifikaciju mikroorganizama, standardizacija mikrobiološke dijagnostike.

    sažetak, dodan 10.09.2010

    Putevi prijenosa sifilisa - polno prenosive zarazne bolesti koje zahvaćaju kožu, sluzokože, unutrašnje organe, kosti i nervni sistem sa uzastopnom promjenom stadijuma bolesti. Ranjivost zubotehničkog laboratorija na infekcije.

    prezentacija, dodano 27.04.2016

    Karakteristike rada kliničko-dijagnostičke laboratorije u savremenim uslovima, procjena aktivnosti kadrova i tehnologija za povećanje njene efikasnosti. Opis rada medicinskog osoblja u laboratoriji, izrada preporuka za optimizaciju.

    kurs, dodato 28.06.2016

    Ruski regulatorni dokumenti koji regulišu proizvodnju lijekova. Struktura, funkcije i glavni zadaci laboratorije za ispitivanje kvaliteta lijekova. Zakonodavni akti Ruske Federacije o osiguravanju ujednačenosti mjerenja.

    priručnik za obuku, dodan 14.05.2013

    Upoznavanje sa materijalima koji se koriste za izradu modernih proteza. Studija automatizovane šeme organizacije rada koja omogućava izradu proteza korišćenjem CAD\CAM tehnologije. Prednosti automatizacije zubotehničkih laboratorija.

    prezentacija, dodano 11.10.2015

    Glavni element zubotehničkog laboratorija je radni sto zubnog tehničara. Dizajn ovog stola, njegova oprema i rasvjeta. Parametri opreme koja se koristi u kancelariji. Najvažniji kriterijumi o kojima zavisi performanse mašine za livenje.

    prezentacija, dodano 14.03.2016

    Pravna osnova za sprovođenje kliničkih ispitivanja fundamentalno novih i ranije nekorišćenih lekova. Etički i pravni principi kliničkog istraživanja formulisani u Helsinškoj deklaraciji Svjetskog udruženja liječnika.

    prezentacija, dodano 25.03.2013

    Faze rada mikrobiološke laboratorije i vrijeme potrebno za svaku od njih. Normativni dokumenti. Opšti zahtjevi za prikupljanje i dostavu uzoraka biološkog materijala za mikrobiološka istraživanja. Interpretacija rezultata ispitivanja.

    prezentacija, dodano 26.04.2016

    Opće odredbe Naredbe ministra zdravlja Republike Kazahstan "O odobravanju Uputa za provođenje kliničkih studija i (ili) ispitivanja farmakoloških i medicinskih proizvoda." Principi za etičku procjenu kliničkog istraživanja.

    prezentacija, dodano 22.12.2014

    Poznavanje glavnih znakova šizofrenije. Analiza psihičkog, somatskog i neurološkog statusa pacijenta. Razmatranje kliničkih metoda za proučavanje mentalnih bolesti. Opće karakteristike laboratorijskih ispitivanja.

Upute za sakupljanje, skladištenje i transport

biološki materijal za laboratorijska istraživanja

Biološki materijal mora biti u označenim epruvetama (kontejnerima) i popraćen popunjenim individualnim uputnicom u jednom primjerku.

Potrebno je pažljivo i čitko popuniti uput, navodeći sljedeće podatke: datum, broj epruvete, naziv zdravstvene ustanove koja je poslala biomaterijal na ispitivanje, ime ljekara koji je preuzeo materijal; Puno ime, dob i spol pacijenta, preliminarna dijagnoza; tokom trudnoće - gestacijsko doba.

Prijem biološkog materijala:

PCR i imunohemijski testovi krvi- Sa 09:00 prije 18:00 osim vikenda i praznika.

Bakteriološke studije- Sa 09:00 prije 11:00 osim petka, vikenda, predpraznika i državnih praznika.

za identifikaciju patogena PCR metodom

1.1.1. Biomaterijal se uzima iz sumnjivog staništa mikroorganizama i razvoja infekcije.

1.1.2. Količina prikupljenog materijala trebala bi biti mala. Višak izlučevina, sluzi i gnoja negativno utiču na kvalitet ekstrakcije DNK i doprinose degradaciji DNK tokom skladištenja i transporta.

1.1.3. Prilikom unošenja biomaterijala uzetog od pacijenta sondom s pamučnim štapićem ili četkom u Eppendorf epruvetu s puferskom otopinom, potrebno je:

Održavanje steriliteta;

Prije uranjanja biomaterijala sakupljenog na štapiću (četkice) u otopinu, namažite ga po suvoj stijenci epruvete, zatim navlažite štapić (četkicu) u otopini i rotirajući sondu temeljito isperite sav materijal sa epruvete. zid epruvete i bris (četkica);


Ako je moguće, stisnite štapić uz zid epruvete, uklonite sondu sa štapićem (četkom) i zatvorite epruvetu.

1.2. Metode prikupljanja biomaterijala za PCR istraživanje

1.2.1. Scrapings. Za struganje se koriste jednokratne sterilne sonde s pamučnim štapićem sa povećanom adsorpcijom ili „četkice“, rjeđe - Volkmann žlice, male žličice za uši ili slični instrumenti s blago zatupljenim rubovima. Pokretima za struganje sakupite materijal. Materijal koji se proučava treba sadržavati najveći mogući broj epitelnih stanica i minimalnu količinu sluzi, krvi i eksudata. Dodajte materijal u sterilnu Eppendorf epruvetu sa puferskim rastvorom (pogledajte odeljak 1.1.).

Struganje iz cervikalnog kanala: prije uzimanja struganja potrebno je sterilnim pamučnim štapićem ukloniti višak sluzi, tretirati cerviks sterilnom fiziološkom otopinom. Sondu umetnite u cervikalni kanal do dubine od 0,5-1,5 cm, izbegavajući kontakt sa zidovima vagine, i sakupite materijal struganjem (ne do krvi). Mali broj crvenih krvnih zrnaca u uzorku ne utiče na rezultat analize. U prisustvu erozije grlića materice materijal se uzima sa granice zdravog i izmijenjenog tkiva.

Struganje uretre: ubacite sondu u mokraćnu cijev (kod muškaraca - do dubine od 2-4 cm) i sakupite materijal s nekoliko rotacijskih pokreta. Uoči prije uzimanja materijala dozvoljena je provokacija (začinjena hrana, alkohol, itd.). Preporučljivo je suzdržati se od mokrenja 1-2 sata prije uzorkovanja. Ako postoji obilni gnojni iscjedak, struganje treba uzeti najkasnije 15 minuta nakon mokrenja.

Struganje konjunktive uzeti, nakon što ste prethodno anestezirali oko sa 0,5% rastvorom dikaina. Nakon što izvrnete kapak, sondom s vatom (ili očnim skalpelom) sakupite epitelne stanice iz konjunktive.

Rektalno struganje: Sondu umetnite u anus do dubine od 3-4 cm i sakupite materijal rotacijskim pokretom.

1.2.2. Strokes. Upotrebom sterilne sonde za jednokratnu upotrebu sa pamučnim štapićem ili četkom, uzmite malu količinu iscjetka (iz vaginalnog svoda, ždrijela, nazofarinksa, itd.) i prenesite je u sterilnu Eppendorf epruvetu s puferskom otopinom (vidi odjeljak 1.1.).

1.2.3. Krv. Za PCR testiranje, krv mora biti native(nije uvijen).

Sakupite krv aseptično, venepunkcijom, u epruvetu (2-3 ml) sa EDTA antikoagulansom ( heparin ne treba koristiti kao antikoagulans!), lagano promiješajte laganim okretanjem cijevi.

Krv s EDTA je biomaterijal za sljedeće grupe studija:

- genetsko istraživanje(trenutak uzimanja krvi nije bitan).

- identifikacija infektivnih agenasa(najinformativniji su uzorci uzeti tokom drhtavice, groznice, tj. vjerovatno tokom viremije ili bakteremije).

1.2.4. Urin. Prvu ili sredinom jutarnjeg urina sakupite u količini od najmanje 10 ml u praznu sterilnu posudu sa čvrsto zašrafljenim poklopcem. Ako se prikupljanje urina vrši tokom dana, onda prije toga pacijent ne bi trebao mokriti 1,5-3 sata.

1.2.5. Sputum. Ujutro isperite usta i grlo (isperite rastvorom sode bikarbone). Sakupite sputum u praznu, sterilnu bocu sa širokim grlom.


1.2.6. Biopsija. Materijal se uzima sa područja na kojem se pretpostavlja da se infektivni agens nalazi, iz oštećenog tkiva ili područja koje graniči sa oštećenjem. Stavite biopsijski uzorak u sterilnu Eppendorf epruvetu sa puferskim rastvorom.

1.2.7. Pljuvačka, želudačni sok, cerebrospinalna tečnost, sinovijalna tečnost. Pljuvačka (1-5 ml), želudačni sok (1-5 ml), likvor (1-1,5 ml) - staviti u praznu sterilnu epruvetu (kontejner).

1.2.8. Sok od prostate. Nakon masaže prostate, sok se sakuplja u količini od 0,5-1 ml u praznu sterilnu epruvetu (kontejner). Ako je nemoguće dobiti sok, odmah nakon masaže sakupite prvu porciju urina u količini ne većoj od 10 ml (ova porcija sadrži sok od prostate).

1.2.9. Ispiranje, bronhoalveolarno ispiranje (BAL). Za ispiranje, na primjer, vrh endoskopa ili bronhoskopa, koristi se sterilni pamučni štapić i 5-7 ml fiziološkog rastvora, a 0,5-5 ml sredstva za ispiranje se stavlja u praznu sterilnu epruvetu (kontejner).

1.2.10. Feces. Sonda sa pamučnim štapićem stavlja se unutar stolice i lagano okreće, hvatajući malu količinu materijala. Materijal se zatim stavlja u sterilnu Eppendorf epruvetu koja sadrži puferski rastvor.

1.3. Pravila za čuvanje biološkog materijala za PCR istraživanja

1.3.1. Razmazi, strugotine:

U frižideru (+4ºS - +8ºS) do 7 dana;

U zamrzivaču (-20ºS) do 14 dana (dozvoljeno je samo jednokratno odmrzavanje!).

1.3.2. Urin: u frižideru (+4ºS - +8ºS) najviše 1 dan;

1.3.3. Krv sa EDTA: u frižideru (+4ºS - +8ºS) - za određivanje infektivnih agenasa - ne više od 1 dan; za genetsko istraživanje – do 4 dana. Ne može se zamrznuti.

1.3.4. Sputum

1.3.5. Biopsije:

U odeljku frižidera (+4ºS - +8ºS) ne više od 1 dan,

U zamrzivaču (-20ºS) do 2 sedmice.

1.3.6. Sok od prostate: u frižideru (+4ºS - +8ºS) ne duže od 1 dana.

1.3.7. Sinovijalna tečnost: u frižideru (+4ºS - +8ºS) ne duže od 1 dana.

2. Pravila za prikupljanje, skladištenje i transport krvi

za imunohemijske studije

2.1.1. Uoči uzimanja krvi izbjegavajte fizičku aktivnost, stresne situacije, fizioterapeutske procedure, uzimanje lijekova (osim u slučajevima lijekova koje je propisao ljekar), oralnih kontraceptiva, pijenje alkoholnih pića i masne hrane. Nemojte pušiti neposredno prije testa.

2.1.2. Prilikom proučavanja funkcije štitne žlijezde tijekom liječenja lijekovima koji sadrže hormone štitnjače, studija se provodi 24 sata nakon posljednje doze lijeka; 2-3 dana prije uzimanja krvi izbjegavajte uzimanje lijekova koji sadrže jod.

2.1.3. Kada proučavate PSA nedelju dana pre testa, isključite svaku manipulaciju prostate.

2.1.4. Krv se uzima ujutro, na prazan želudac (da bi se izbjegla hiloza, tj. zamućenje seruma), u uslovima fiziološkog mirovanja. Prije uzimanja krvi, pacijentu se mora dati odmor od 15 minuta.

2.1.5. Krv se uzima u sali za tretman zdravstvene ustanove, u sjedećem ili ležećem položaju, iz ulnarne vene u skladu sa pravilima asepse i antisepse. Krv se prikuplja u sterilnu epruvetu, mono-špric ili sistem za prikupljanje krvi (Vacutainer®, Vacuette®).

2.1.6. Da bi se dobio serum, venska krv se ostavi da se slegne dok se potpuno ne zgruša. Nakon formiranja fibrinskog ugruška, potonji se odvaja od zidova sterilnom staklenom šipkom, strogo individualnom za svaki uzorak, epruveta se centrifugira na 3000 o/min 15 minuta. * .

* Mono-štrcaljke i sistemi za prikupljanje krvi (Vacutainer®, Vacuette®) se podvrgavaju centrifugiranju bez prethodnih manipulacija.

2.1.7. Žuti supernatant (serum) se pažljivo pipetira u praznu epruvetu sa poklopcem (5 ml).

2.2. Pravila za čuvanje krvi i seruma za imunohemijske studije

2.2.1. TOnivo: u frižideru (+40C - +80C) 1 dan.

2.2.2.Serumkrv:

U frižideru na temperaturi od +40C - +80C 4 dana;

U zamrzivaču na -200C 2 sedmice.

Dozvoljeno je samo jedno odmrzavanje!

PAŽNJA! Serum koji ne sadrži nečistoće eritrocita, bakterijske izrasline, hilozu, hemolizu je predmet istraživanja. U prisustvu bilo kojeg od ovih znakova, serum se uništava i propisuje se ponovljeno uzimanje krvi.

2.3. Pravila za prikupljanje i čuvanje krvi za testiranje na lupus antikoagulans

I studije koagulacije

2.3.1. Krv se uzima ujutro na prazan želudac iz kubitalne vene u skladu sa pravilima asepse i antisepse na dan ispitivanja. Kako bi se spriječilo aktiviranje zgrušavanja krvi, kompresija vene ne smije biti duža od 1 minute .

2.3.2. Ako je studija propisana u pozadini uzimanja lijekova koji utječu na zgrušavanje krvi, to treba napomenuti u smjeru.

2.3.3. Krv se sakuplja u posebnu epruvetu koja sadrži natrijum citrat, do oznake. Ako se ovo pravilo ne poštuje, mijenja se odnos krv/antikoagulans, što može negativno utjecati na točnost rezultata.

2.3.4. U roku od 1 sata nakon uzimanja krvi, epruveta se mora centrifugirati na 3000 o/min 15 minuta.

2.3.5. Čuvanje plazme: do 6 sati na temperaturi od +40C - +80C ili do 2 nedelje na temperaturi od -200C.

2.4. Pravila za prikupljanje i skladištenje krvi za proučavanje glikiranog (glikoziliranog) hemoglobina

2.4.1. Krv se uzima ujutro na prazan želudac iz ulnarne vene, poštujući pravila asepse i antiseptike.

2.4.2. Krv se sakuplja u posebnu epruvetu koja sadrži EDTA i glatko se miješa. Nemojte centrifugirati!

2.4.3. Dostava u Laboratoriju na dan uzimanja krvi.

2.4.4. Skladištenje: do 2 sedmice na -200C.

2.5. Pravila za prenatalni skrining

2.5.1. Optimalno vrijeme studije: I trimestar - 10-13 sedmica trudnoće; II trimestar – 16-18 nedelja trudnoće.

2.5.2. Prilikom slanja na studiju popunjava se poseban smjer u kojem je potrebno navesti individualne podatke trudnice: godine (dan/mjesec/godina), težinu, rezultate ultrazvuka (CTR, BPR, broj fetusa, starost trudnoće prema ultrazvuku (sedmice + dani); ako postoje - podaci o veličini cervikalnog nabora - NT) uz obavezno navođenje datuma ultrazvuka i imena lekara koji je ultrazvuk uradio; prisustvo dodatnih faktora rizika (pušenje, dijabetes, IVF), etnička pripadnost.

2.5.3. Za skrining u drugom tromjesečju trudnoće možete koristiti ultrazvučne podatke obavljene u prvom tromjesečju.

3. Pravila uzimanja, skladištenja i transporta biomaterijala

za bakteriološka istraživanja

3.1. Biomaterijal se uzima prije primjene kursa antibakterijske terapije ili ne manje od nedelju dana nakon njegovog završetka.

3.2. Kako bi se spriječila kontaminacija uzorka mikroorganizmima iz vanjskog okruženja, uzeti biomaterijal se prenosi u praznu posudu ili epruvetu sa transportnim medijem u skladu sa standardnim pravilima sterilnosti: čep epruvete (kontejnera) se otvara/zatvara tako da da unutrašnjost čepa ostane sterilna; sterilni kontejneri ne ostaju dugo otvoreni.

3.3. Uzimanje biomaterijala za identifikaciju mikoplazme i ureaplazme, trihomonade, gonokoke, nespecifična mikroflora, kulture anaerobnih bakterija proizvedeno u markiranim cijevima sa medijem za transport ugljika:

Otvorite paket na naznačenom mestu prema dijagramu;

Uklonite epruvetu i otvorite je, bacite poklopac;

Koristite sondu da uzmete struganje/razmaz, uzorak biopsije ili umočite sondu u biološku tečnost;

Sondu sa biomaterijalom odmah stavite u epruvetu (ručica sonde je poklopac epruvete);

Označite epruvetu i označite broj u smjeru.

3.4. Vrste biološkog materijala za unos u transportnu sredinu uglja: brisevi/struganje, sok prostate, cerebrospinalna tečnost, sinovijalna tečnost, biopsija.

3.5. Čuvanje biomaterijala u epruvetama sa transportnim medijumom za detekciju mikoplazme i ureaplazme, nespecifična mikroflora do momenta transporta -

Dostava u Laboratoriju u roku od jednog dana.

3.6. Čuvanje biomaterijala u epruvetama sa transportnim medijumom za detekciju Trichomonas, gonokoki, kulture anaerobnih bakterija do momenta transporta - na sobnoj temperaturi.

3.7. Nativni biomaterijal: sputum, sok prostate, sinovijalna tečnost od 1 do 10 ml za otkrivanje nespecifične mikroflore, mikoplazme i ureaplazmi se sakupljaju u praznu sterilnu posudu.

Potrebno je obavijestiti Laboratoriju dan prije ili na dan uzimanja biomaterijala do 11:00 sati.

Čuvanje prirodnog biomaterijala do transporta - u odeljku frižidera (+4ºS - +8ºS).

Dostava u Laboratoriju na dan preuzimanja materijala.

3.8. Urin za ispitivanje stepena bakteriurije(prosječna jutarnja porcija, 10-20 ml) sakuplja se u praznu sterilnu posudu sa poklopcem nakon temeljitog toaleta vanjskih genitalija.

Potrebno je obavijestiti Laboratoriju dan prije ili na dan uzimanja biomaterijala do 11:00 sati.

Čuvanje biomaterijala do transporta - u odeljku frižidera (+4ºS - +8ºS).

Dostava u Laboratoriju na dan preuzimanja biomaterijala.

3.9. Krv za sterilitet.

Najinformativniji je uzorak krvi uzet tokom porasta temperature.

Krv se sakuplja u markirane boce sa dvofaznim transportnim sredstvom (boca za odrasle, flaša za djecu). Pažljivo otvorite plastični zatvarač boce i obrišite gumeni čep koji izlazi 70% alkohola. U sterilnim uslovima uzmite špricom krv iz vene i ubrizgajte je kroz gumeni čep u bočicu (4 ml u bočicu za odrasle, 2 ml u bočicu za decu).

Potrebno je obavijestiti Laboratoriju dan prije ili na dan uzimanja biomaterijala do 11:00 sati.

Čuvanje krvi do transporta - na sobnoj temperaturi.

Dostava u Laboratoriju na dan preuzimanja biomaterijala.

3.10. Majčino mleko za identifikaciju nespecifične mikroflore uzima se iz svake dojke u zasebnu sterilnu hermetički zatvorenu čašicu. Označite čaše: “lijeva dojka”, “desna dojka”.

Prije uzimanja biomaterijala, operite grudi toplom vodom i sapunom, obrišite čistim ručnikom, pažljivo tretirajte bradavice i područje bradavica pamučnim štapićem navlaženim u 70% otopini etil alkohola i osušite sterilnom krpom (svaka žlezda se tretira posebnim tamponom). Prvih 10-15 ml izcijeđenog mlijeka se ne koristi za analizu. Drugu porciju mlijeka iz svake dojke iscijedite u označenu šolju u količini od ~10 ml.

Potrebno je obavijestiti Laboratoriju dan prije ili na dan uzimanja biomaterijala do 11:00 sati.

Dostava u Laboratoriju u roku od 2 sata na dan preuzimanja materijala.

3.11. Izmet za disbakteriozu.

Prije uzimanja uzorka zabranjeno je konzumiranje alkohola 3 dana i uzimanje antibiotika 2 sedmice. Stolica se mora dobiti bez klistiranja ili laksativa. Za djecu sa zatvorom može se koristiti komad sapuna za iritativno djelovanje. Izmet se skuplja u pojedinačnu posudu, isperu od dezinfekcionog sredstva. Uzmite sterilnom kašikom 3-5 g prosječne porcije izmeta i stavite u sterilnu posudu.

Potrebno je obavijestiti Laboratoriju dan prije ili na dan uzimanja biomaterijala do 11:00 sati.

Čuvanje do transporta - čuvati kontejner sa biomaterijalom umotanim u vatu i papir radi očuvanja toplote.

Dostava u Laboratoriju na dan preuzimanja biomaterijala.

4. Pravila za uzimanje, skladištenje i transport biomaterijala

za mikroskopske studije

4.1. Od svakog pacijenta - 2 čaše(jedna čaša - rezervna). Na svakoj čaši - 3 boda: vagina ( V), cervikalni kanal ( WITH), uretra ( U). Nanesite poteze tako da mat površina bude lijevo, na vrhu, a od nje - s lijeva na desno: v, c, u.

4.2. Oznaka (br.) na staklu se ne smije otopiti u alkoholu (možete se potpisati na matiranom dijelu stakla jednostavnom olovkom). Razmazi se fiksiraju sušenjem na vazduhu (30-60 min).

4.3. Naočare moraju biti označene, presavijene jedna uz drugu, upakovane u pojedinačnu vrećicu sa odgovarajućim pratećim natpisom (zdravstvena ustanova, puno ime pacijenta, broj na staklu).

4.4. Paket i popunjena uputnica se šalju u Laboratoriju.

5. Pravila za uzimanje, skladištenje i transport biomaterijala

5.1. 24 sata prije studije treba izbjegavati ispiranje, intravaginalnu terapiju i seksualne odnose. Ne možete uzimati materijal tokom menstruacije. Najinformativniji su uzorci uzeti 14-20 dana nakon početka menstruacije.

5.2. Materijal se uzima prije bimanualnog pregleda, raznih dijagnostičkih testova, te prije uzimanja materijala za PCR. Materijal se uzima bez prethodne obrade vaginalne sluznice.

5.3. Struganje sa vaginalne/cervikalne sluzokože uzima se najlonskom cervex-četkicom, lopaticom ili drugim instrumentom i ravnomjerno se raspoređuje po stakalcu, ostavljajući jedan kraj stakalca čistim (za označavanje). Na staklu se uzima jedan bod, dupliran za još jedno rezervno staklo (samo dvije čaše po bodu). Razmazi se fiksiraju sušenjem na vazduhu (30-60 min).

5.4. Naočare moraju biti označene (br. i puno ime pacijenta), presavijene brisevima jedna uz drugu, upakovane u pojedinačnu vrećicu sa odgovarajućim pratećim natpisom (HCI, puno ime pacijenta, br. na staklu).

5.5. Osušeni razmazi mogu se čuvati do 6 dana na sobnoj temperaturi.

5.6. Paket i popunjeni smjer (svaka točka ima svoj smjer koji označava vrstu biomaterijala) se prenose u Laboratoriju.

Ne stavljajte smjer u vrećicu sa naočalama, nemojte omotati čaše u smjeru!

UROGENITALNA HLAMIDIOZA

Materijal za istraživanje Struganje iz uretre ili cervikalnog kanala, sekret prostate, sediment urina. U novorođenčadi se kao materijal za istraživanje koriste strugoti s konjunktive očiju i stražnjeg zida ždrijela. Kod djevojčica se kao materijal za istraživanje koriste strugotine sa vulve, a kod dječaka urin.

Pripremajući pacijenta, uzimanje biološkog materijala i uslove za njegov transport 10 dana prije uzimanja materijala za istraživanje, morate prekinuti uzimanje kemoterapije i postupaka liječenja.

Značajke uzimanja materijala iz uretre

  • prije uzimanja materijala, pacijentu se savjetuje da se suzdrži od mokrenja 1,5-2 sata;
  • neposredno prije uzimanja materijala, vanjski otvor uretre mora se tretirati tamponom navlaženim sterilnom fiziološkom otopinom;
  • u prisustvu gnojnog iscjetka preporučuje se struganje 15-20 minuta nakon mokrenja, u nedostatku iscjetka potrebno je masirati uretru sondom za prikupljanje materijala;
  • kod žena, prije uvođenja sonde u uretru, ona se masira na pubičnom zglobu;
  • Kod žena, sonda se ubacuje u uretru do dubine od 1,0-1,5 cm, kod muškaraca - do 3-4 cm, a zatim se napravi nekoliko rotacijskih pokreta; kod djece se materijal za istraživanje uzima samo iz vanjskog otvora uretre;

Karakteristike uzimanja materijala iz cervikalnog kanala

  • prije uzimanja materijala potrebno je ukloniti sluz pamučnim štapićem, a zatim tretirati cerviks sterilnom fiziološkom otopinom;
  • sonda se ubacuje u cervikalni kanal do dubine od 0,5-1,5 cm;
  • ako postoje erozije cervikalnog kanala, potrebno ih je tretirati sterilnom fiziološkom otopinom, a materijal uzeti na granici zdravog i izmijenjenog tkiva;
  • prilikom uklanjanja sonde potrebno je potpuno izbjeći njen kontakt sa zidovima vagine;

Nakon uzimanja materijala, sonda se spušta u epruvetu sa transportnim medijumom DNA-EXPRESS. Nakon što se sonda unese u transportni medij, rotira se nekoliko puta, a zatim se uklanja iz cijevi. Testna oznaka je zatvorena i označena. Ako je vrijeme transporta biološkog materijala od trenutka preuzimanja do momenta njegove isporuke u laboratoriju duže od 2 sata, tada se epruveta mora zamrznuti na -20 0 C. Transport biološkog materijala treba vršiti samo u rashladnoj torbi. Zamrznuti biološki materijal može se čuvati najviše 2 sedmice.

Osobine uzimanja sekreta prostate

Prije uzimanja tajne prostate, glans penisa se tretira sterilnim pamučnim štapićem navlaženim fiziološkom otopinom. Tajna prostate se uzima nakon preliminarne masaže prostate kroz rektum. Doktor izvodi masažu pritiskom sa nekoliko snažnih pokreta od baze do vrha. Zatim se iz kavernoznog dijela istiskuje sekret prostate. Transport biološkog materijala treba obavljati samo u rashladnoj torbi.

Osobine uzimanja (sakupljanje) urina

Urin se sakuplja ujutro na prazan želudac nakon spavanja ili ne prije 2-3 sata nakon posljednjeg mokrenja. Jutarnji urin se taloži 1 sat, a zatim se pažljivo spaja, ostavljajući samo donji dio - oko 10 ml. Ovaj ostatak se sipa u epruvetu za centrifugiranje i centrifugira. Zatim se supernatant ponovo odvodi, a precipitat (bez tečnosti) se sondom prenosi u PCR epruvetu.

Urin ne treba hladiti ili zamrzavati dok se ne dobije sediment.

Karakteristike uzimanja materijala iz stražnjeg dijela grla

Jednokratna sonda se ubacuje iza mekog nepca u nazofarinks i prolazi duž zadnje stijenke ždrijela. Nakon uzimanja materijala, sonda se spušta u epruvetu sa transportnim medijumom “DNA-EXPRESS”. Nakon uvođenja sonde u transportni medij, ona se rotira nekoliko puta i zatim uklanja iz cijevi. Tuba je zatvorena i označena. Ako je vrijeme transporta biološkog materijala od trenutka prikupljanja do trenutka njegove isporuke u laboratoriju duže od 2 sata, epruveta se mora zamrznuti na -200C. Transport biološkog materijala treba obavljati samo u rashladnoj torbi. Zamrznuti biološki materijal može se čuvati najviše 2 sedmice.

Osobine uzimanja materijala iz konjunktive očiju

Ako postoji obilni gnojni iscjedak, uklanja se sterilnim pamučnim štapićem navlaženim fiziološkom otopinom. Struganje se uzima sa unutrašnje površine donjeg kapka koji se kreće prema unutrašnjem uglu palpebralne fisure. Prilikom uzimanja struganja morate rukama držati kapak tako da trepavice ne dodiruju sondu kada trepnete.

Nakon uzimanja materijala, sonda se spušta u epruvetu sa transportnim medijumom “DNA-EXPRESS”. Nakon uvođenja sonde u transportni medij, ona se rotira nekoliko puta i zatim uklanja iz cijevi. Epruveta je dobro zatvorena. Ako je vrijeme transporta biološkog materijala od trenutka prikupljanja do trenutka njegove isporuke u laboratoriju duže od 2 sata, epruveta se mora zamrznuti na -200C. Transport biološkog materijala treba obavljati samo u rashladnoj torbi. Zamrznuti biološki materijal može se čuvati najviše 2 sedmice.

UROGENITALNA MIKOPLAZMOZA

Materijal za istraživanje Iscjedak iz uretre, vagine, cervikalnog kanala, urin (centrifuga jutarnjeg prvog i srednjeg dijela), sekret prostate, sperma.

Karakteristike uzimanja materijala iz vagine

Materijal se mora uzeti prije izvođenja ručnog pregleda. Prije manipulacije, ogledalo se može navlažiti toplom vodom, upotreba antiseptika za tretiranje ogledala je kontraindicirana. Vaginalni iscjedak se sakuplja sterilnom sondom za jednokratnu upotrebu sa stražnjeg donjeg forniksa ili sa patološki promijenjenih područja sluznice i stavlja u epruvetu sa transportnim medijumom “DNA-EXTPESS”. Kod djevojčica se materijal uzima iz sluzokože vaginalnog predvorja, au nekim slučajevima - iz stražnjeg vaginalnog forniksa kroz himenalne prstenove. Nakon uvođenja sonde u transportni medij, ona se rotira nekoliko puta i zatim uklanja iz cijevi. Tuba je zatvorena i označena. Ako je vrijeme transporta biološkog materijala od trenutka prikupljanja do trenutka njegove isporuke u laboratoriju duže od 2 sata, epruveta se mora zamrznuti na -200C. Transport biološkog materijala treba obavljati samo u rashladnoj torbi. Zamrznuti biološki materijal može se čuvati najviše 2 sedmice.

GONOREJA

Materijal za istraživanje Iscjedak iz uretre, cervikalni kanal, sekret prostate, sediment mokraće.

Priprema bolesnika, prikupljanje biološkog materijala i uslovi za njegov transport Vidi urogenitalnu klamidiju.

10 dana prije uzimanja materijala za istraživanje morate prestati uzimati lijekove za kemoterapiju i postupke liječenja. Materijal za istraživanje kod žena treba uzeti prije menstruacije ili 1-2 dana nakon njenog završetka. Prije uzimanja materijala, morate se suzdržati od mokrenja 3-4 sata i od seksualnog odnosa. Žene uoči pregleda ne bi trebalo da vrše toalet spoljnih genitalija i ispiranje. Materijal koji se ispituje mora biti bez krvi. Sekret iz uretre koji slobodno teče ne treba uzimati na pregled. Sekret prostate treba uzimati tek nakon prestanka akutnih simptoma prostatitisa. Za indolentnu i kroničnu gonoreju, provokacija se mora izvršiti prije studije.

Metode provokacije gonoreje:

  • biološki: davanje gonovaccine (500 miliona mikrobnih tijela) odraslima jednokratno, intramuskularno, za djecu stariju od 3 godine - 100-200 miliona mikrobnih tijela; Primjena gonovaccine se ne preporučuje djeci mlađoj od 3 godine;
  • termalni: koristiti za 3 dana dijatermije sa abdominalno-vaginalno-sakralnim rasporedom elektroda u trajanju od 30, 40, 50 minuta ili induktotermijom u trajanju od 10, 15, 20 minuta; Najbolje je uzimati materijal iz uretre i cervikalnog kanala 1 sat nakon svakog zagrijavanja;
  • mehanički: nanošenje metalne kapice na cerviks žena 4 sata, izvođenje uretralne masaže kod muškaraca na bougie-u 10 minuta;
  • nutritivna: konzumacija slane, začinjene hrane i alkohola 24 sata prije testa.

Materijal se uzima nakon provokacije i nakon 24-48-72 sata.

Da bi se dobili najpouzdaniji rezultati, potrebna su ponovljena istraživanja.

TRIHOMONIJAZA

Materijal za istraživanje Iscjedak iz uretre (kod muškaraca), vagine, sekret prostate.

Priprema pacijenta, prikupljanje biološkog materijala i uslovi za njegov transport Vidi urogenitalna klamidija, urogenitalna mikoplazmoza.

TUBERKULOZA (ekstrapulmonalne lokalizacije)

Materijal za istraživanje: Urin, bris iz cervikalnog kanala, uretra.

Priprema pacijenta, uzimanje biološkog materijala i uslovi za njegov transport 10 dana pre uzimanja materijala na istraživanje, potrebno je prekinuti uzimanje hemoterapijskih lekova i medicinskih procedura. Vidi urogenitalnu klamidiju.

BOLESTI DIŠA POVEZANI SA Mycoplasma pneumoniae

Materijal za istraživanje Bris nazofarinksa.

Karakteristike uzimanja brisa iz nazofarinksa Bris se uzima na prazan želudac ili ne ranije od 2-4 sata nakon obroka. Prilikom uzimanja materijala potrebno je dobro osvjetljenje, pacijent sedi uz izvor svjetlosti, lopaticom se pritisne korijen jezika, materijal se uzima sterilnom sondom bez dodirivanja jezika, bukalne sluznice i zuba i spušta se u test epruveta sa transportnim medijumom “DNA-EXPRESS”. Nakon uzimanja materijala, sonda se spušta u epruvetu sa transportnim medijumom “DNA-EXPRESS”. Nakon uvođenja sonde u transportni medij, ona se rotira nekoliko puta i zatim uklanja iz cijevi. Epruveta je zatvorena. Ako je vrijeme transporta biološkog materijala od trenutka prikupljanja do trenutka njegove isporuke u laboratoriju duže od 2 sata, epruveta se mora zamrznuti na -200C. Transport biološkog materijala treba obavljati samo u rashladnoj torbi. Zamrznuti biološki materijal može se čuvati najviše 2 sedmice.

GASTRODUODENALNE BOLESTI (gastritis, čir na želucu ili dvanaesniku) POVEZAN SA Helicobacter pylori

Materijal za istraživanje Biopsije antruma želuca, biopsije duodenuma, biopsije desni, bris iz parodontalnog džepa.

Karakteristike uzimanja biopsijskog materijala

Biopsijski materijal se uzima tokom endoskopskog pregleda. Prije početka terapije protiv Helicobacter pylori, uzima se uzorak biopsije iz antruma želuca. Prilikom praćenja liječenja, uzorak biopsije se uzima najranije 4 sedmice nakon anti-Helicobacter terapije iz tijela želuca. Uzeti uzorak biopsije stavlja se u sterilnu, suhu Eppendorf epruvetu i odmah transportuje u laboratoriju. Za duže skladištenje moguće je zamrznuti biopsijski materijal na temperaturi od -20 0 C.

Karakteristike uzimanja biopsijskih uzoraka desni, brisa iz parodontalnog džepa i pljuvačke

Biopsijski materijal sa desni, bris iz parodontalnog džepa i pljuvačka uzimaju se od pacijenata sa istorijom gastroduodenalne patologije i prisustvom gingivitisa i parodontalne bolesti.

Uzeti uzorak biopsije stavlja se u sterilnu, suhu Eppendorf epruvetu i odmah transportuje u laboratoriju. Za duže skladištenje moguće je zamrznuti biopsijski materijal na temperaturi od -20 0 C.

Razmazi iz parodontalnog džepa se sakupljaju u sterilnu Eppendorf epruvetu sa fiziološkim rastvorom. U tom slučaju epruvete se mogu čuvati u frižideru (+4 0 C - +6 0 C) ne duže od 12 sati, a transportuju se u rashladnoj torbi.

VIRUSNE INFEKCIJE

Herpes Simplex virus II; Citomegalovirus; H. papiloma virus 16, 18

Ispitni materijal - brisevi

Za herpetične infekcije, struganje je najbolje uzeti sa genitalnih lezija (vezikule, čirevi). U nedostatku genitalnih lezija, uzima se struganje iz cervikalnog kanala. Prilikom dijagnosticiranja citomegalovirusne infekcije, materijal za istraživanje može biti bris sa stražnje strane grla, strugotine iz vagine, uretre i cervikalnog kanala, pljuvačka i cerebrospinalna tekućina. Prilikom dijagnosticiranja infekcije humanim papiloma virusom, materijal za istraživanje može biti bris iz nazofarinksa, iz konjunktive oka, struganje iz cervikalnog kanala, cerviksa, tj. sluzokože (nekeratinizirani epitel).

Prikupljanje biološkog materijala Prikupljanje biološkog materijala treba, ako je moguće, vršiti u periodu pogoršanja infekcije. Vidi urogenitalna klamidija, urogenitalna mikoplazmoza.

Herpes Simplex virus I; Herpes Simplex virus II; Herpes Simplex virus VI
Citomegalovirus; Epstein Barr virus

Materijal za ispitivanje Domaća krv.

Priprema pacijenta, uzimanje biološkog materijala i uslovi za njegov transport Preporučljivo je vaditi krv za analizu na prazan želudac.

Venska krv u količini od 1-1,5 ml sakuplja se u sterilnu Eppendorf epruvetu od 1,5 ml sa rastvorom EDTA. Epruveta krvi može se čuvati u frižideru (+4 0 C - +6 0 C) najviše 24 sata. Nemojte zamrzavati epruvetu. Studija će se provoditi iz plazme i krvnih stanica.

HBV-DNK; Određivanje koncentracije HBV-DNA kompetitivnim PCR-om
HCV-RNA (sekventitativna procjena) + anti-HCV; HCV-RNA sa određivanjem HCV+ anti-HCV genotipa; Hepatitis G; TTV-DNK

Materijal za ispitivanje: Krvni serum.

Priprema pacijenta, uzimanje biološkog materijala i uslovi za njegov transport. Za vađenje venske krvi i pripremu seruma pogledati odeljak o određivanju koncentracije hormona ELISA-om. Serum koji ne sadrži nikakve primjese crvenih krvnih zrnaca mora se testirati. Ako je potrebno čuvati uzorak krvi koji se proučava duže vrijeme (samo za hepatitis B, C, G), potrebno je uzeti 1 ml seruma ili krvne plazme i čuvati na temperaturi od -20 0 C do ne duže od 2 sedmice.

SVEOBUHVATNA STUDIJA BAKTERIJSKE VAGINOZE

Materijal za ispitivanje: Razmazi sa stražnjeg donjeg vaginalnog forniksa.

Za sveobuhvatnu dijagnozu bakterijske vaginoze potrebno je:
Uzmite struganje epitelnih ćelija sa zadnjeg ili bočnog forniksa vagine na posebnom staklenom predmetu za jednokratnu upotrebu, potpišite ga i osušite. Čuvajte staklo na sobnoj temperaturi.
Uklonite sluz i uzmite struganje epitelnih ćelija sa zadnjeg ili lateralnog forniksa vagine pomoću sonde za jednokratnu upotrebu četkice za cerviks u PCR epruvetu sa DNA-EXPRESS reagensom. Čuvajte tubu u zamrzivaču na minus 20°C do 10 dana.
Stavku i PCR epruvetu poslati u laboratoriju "Litekh" sa potpuno popunjenim smjerom.

Prikupljanje biološkog materijala i uslovi za njegov transport

Pogledajte karakteristike uzimanja materijala iz vagine za citološke i PCR studije.